Zestaw szybkiego przygotowania biblioteki DNA V2 K001S-A, K001S-B
Szczegóły Produktu:
Miejsce pochodzenia: | Chiny |
Nazwa handlowa: | GDSBio |
Orzecznictwo: | ISO9001, ISO13485 |
Numer modelu: | K001S-A, K001S-B |
Zapłata:
Minimalne zamówienie: | 1 zestaw |
---|---|
Szczegóły pakowania: | mała paczka lub dystrybucja hurtowa lub OEM |
Czas dostawy: | 8 dni roboczych |
Zasady płatności: | L/C, D/A, D/P, T/T, Western Union, MoneyGram |
Możliwość Supply: | 1000 zestawów dziennie |
Szczegóły informacji |
|||
Magazyn: | Tak | Kot. NIE.: | K001S-A, K001S-B |
---|---|---|---|
Specyfikacja: | K001S-A/24 rxns; K001S-B/96 rxns; worek na próbki / 6 rxns | Wygląd: | Kompletny, bez uszkodzeń |
Typ biblioteki: | DNA | Platforma sekwencjonowania: | Illumina |
Drukowanie logo: | Z nadrukiem logo | Pakiet transportowy: | Uszczelka |
Zdolność produkcyjna: | 1000 zestawów dziennie | Warunki przechowywania: | -20°C, z okresem ważności 12 miesięcy. |
High Light: | GDSBio jednorazowa probówka do pobierania próbek wirusów,jednorazowa probówka do pobierania próbek wirusów klasy I,100% nylonowa probówka do pobierania próbek wirusów |
opis produktu
Szybki zestaw do przygotowywania biblioteki DNAV2
[Nazwa produktu]
Szybki zestaw do przygotowywania biblioteki DNA V2
[Kot.Nr/Spec.]
K001S-A/24 rxns;K001S-B/96 rxns;worek na próbki / 6 rxns
[Opis produktu]
Mając na celu wysokowydajną platformę sekwencjonowania Illumina, zestaw ten zapewnia wygodny i uniwersalny schemat konstrukcji biblioteki DNA w jednej probówce.Łączy naprawę końcówek i A-Tailing w jednym kroku, znacznie skracając czas budowy biblioteki i redukując błędy powodowane przez żmudne kroki.Przygotowanie końców, ligacja adaptera, amplifikacja i oczyszczanie pofragmentowanego dwuniciowego DNA można przeprowadzić w ciągu około 2 godzin.Pełne oznaczenie ilościowe biblioteki można przeprowadzić metodą barwnika fluorescencyjnego dsDNA (np. Thermo Qubit Flex Fluorometer) lub bezwzględną ilościową metodą PCR po rozcieńczeniu biblioteki do odpowiedniego stężenia.
[Typ próbki]
Aplikacja | Typ próbki | Zalecana ilość |
Sekwencjonowanie całego genomu | Wysokiej jakości złożone genomy | 50 ng-1 μg |
Docelowe sekwencjonowanie przechwytywania całego egzomu | Wysokiej jakości złożone genomy | 10 ng-1 μg |
Sekwencjonowanie docelowego wychwytywania całego genomu | DNA FFPE | ≥50 ng |
Sekwencjonowanie docelowego wychwytywania całego genomu | cfDNA/ctDNA | ≥100 str |
Sekwencjonowanie całego genomu | Genom drobnoustrojów | 1 ng-1 μg |
Sekwencjonowanie całego genomu (bez PCR) | DNA wysokiej jakości |
≥50ng (bez wyboru rozmiaru) ≥200ng (wybór rozmiaru) |
ChIP-Seq | DNA chipa | ≥100 str |
Ukierunkowane sekwencjonowanie | amplikon | ≥100 str |
[Warunki przechowywania i trwałość]
Wszystkie odczynniki należy przechowywać w temperaturze -20°C.Wytrącanie się kryształów w buforze ligacyjnym jest zjawiskiem normalnym w niskich temperaturach, dlatego przed użyciem należy doprowadzić go do temperatury pokojowej.Produkt jest ważny przez 12 miesięcy.
[Składniki]
Część | 24 rxns | 96 rxns |
End Repair & A-Tailing Enzyme Mix | 120 μl | 2×240 μl |
Naprawa końcówek i bufor A-Tailing | 240 μl | 2×480 μl |
Szybka ligaza DNA | 120 μl | 2×240 μl |
Szybki bufor ligacyjny | 600 μl | 4×600 μl |
2× HIFI Library PCR Master Mix | 600 μl | 4×600 μl |
Mieszanka podkładów* | 120 μl | 480 μl |
* Jeśli jest więcej niż jedna próbka, zalecana jest mieszanina podkładów adaptacyjnych #K002 i #K003.Ten zestaw zawiera zestaw podkładów z indeksem.
Uwaga: zalecane koraliki selekcyjne: #NC1011 GDSPure DNA Selection Magbeads lub koraliki AMPure XP.
[Notatki]
1. Oferujemy dwa rodzaje zestawów starterów Universal Adapter (Adapter GDS, #K002 i #K003, do kupienia osobno), ale klienci mogą również wybierać spośród innych producentów lub zsyntetyzować własny Adapter do platformy sekwencjonowania Illumina.Zbyt duży adapter doprowadzi do powstania dimeru adaptera, a niewystarczający adapter doprowadzi do niskiej wydajności biblioteki.Dlatego odpowiednie stężenie adaptera decyduje o stężeniu i jakości biblioteki.Zalecane stężenia adapterów dla różnych ilości wejściowego DNA przedstawiono w poniższej tabeli:
Tabela 1 Zalecane stężenia adaptera
Wejście DNA | Zalecane stężeniedla adaptera | Adapter:Wstaw stosunek molowy* | Stopnie rozcieńczenia adaptera GDS |
1μg | 10μM | 10:1 | Bez rozcieńczania |
500 ng | 10μM | 20:1 | Bez rozcieńczania |
250 ng | 10μM | 40:1 | Bez rozcieńczania |
100 ng | 7,5 μM | 100:1 | 3:4 |
50 ng | 5μM | 200:1 | 1:2 |
25 ng | 2,5 μM | 200:1 | 1:4 |
1 ng | 1μM | 200:1 | 1:10 |
* Stosunek molowy adaptera: wkładka odnosi się do stosunku liczby molowej adaptera z innych źródeł do liczby molowej wejściowego DNA, który można z grubsza obliczyć, odnosząc się do następującego wzoru:
Liczba wejściowa DNA (pmol) ≈ Masa wejściowa DNA (ng)/[0,66 × średnia długość wejściowa DNA (bp)]
*Jakość i koncentracja adaptera znacznie wpływają na wydajność biblioteki, szczególnie w przypadku bibliotek o niskim poziomie wejściowym.Przed ligacją należy wybrać adapter z wysokiej jakości źródła i rozcieńczyć go do odpowiedniego stężenia za pomocą 0,1×TE.Do natychmiastowego użycia należy upewnić się, że każda dodana próbka to stałe 5 μl, unikać błędów w dodawaniu próbki i starać się unikać wielokrotnego zamrażania i rozmrażania.
2. Enzym zastosowany w 2× HIFI Library PCR Master Mix to polimeraza DNA z rodziny B, która ma aktywność polimerazy 5 „-3” i aktywność egzonukleazy 3 „-5”, ale brakuje jej aktywności egzonukleazy 5 „-3”.Ma wysoką wierność i jednorodność oraz silną zdolność zrównoważonej syntezy.Ścisła kontrola liczby cykli amplifikacji jest szczególnie ważna dla wydajności biblioteki.Poniższa tabela przedstawia zalecaną liczbę cykli amplifikacji odpowiadającą różnym ilościom wejściowego DNA:
Tabela 2 Zalecana liczba cykli amplifikacji odpowiadająca różnym wejściowym próbkom
Wprowadź DNA | Zalecana liczba cykli amplifikacji | |
Biblioteka 100ng | Biblioteka 1μg | |
1μg | 0 | 2-5 |
500 ng | 0 | 2-5 |
250 ng | 1-3 | 5-7 |
100 ng | 2-4 | 6-8 |
50 ng | 4-6 | 8-10 |
25 ng | 5-7 | 9-12 |
10 ng | 7-9 | 11-13 |
5 ng | 9-11 | 13-14 |
2,5 ng | 10-12 | 14-16 |
1 ng | 11-13 | 15-17 |
Uwaga: 1. Powyższa tabela przedstawia wyniki testu przy użyciu standardowego DNA o wielkości 150 bp, który służy wyłącznie jako odniesienie.
2. W przypadku użycia niekompletnych łączników należy przeprowadzić amplifikację w minimalnej liczbie cykli (1-3), aby uzyskać kompletną bibliotekę.
3. Jeżeli jakość wejściowego DNA jest słaba lub podczas konstruowania biblioteki przeprowadzana jest selekcja wielkości, należy odpowiednio zwiększyć liczbę cykli amplifikacji.
[Proces budowy biblioteki standardowej]
Zakończ naprawę
Uwaga: Jeśli pofragmentowany DNA przekracza 45 μl przed tym etapem lub bufor jest niekompatybilny z buforem do naprawy końcówek, najpierw należy przeprowadzić oczyszczanie z wykorzystaniem kulek magnetycznych.
1. Przygotuj następującą reakcję w 200 μl probówce do PCR:
Odczynniki | Tom |
Fragmentacja DNA | Zmienny |
End Repair & A-Tailing Enzyme Mix | 5 μl |
Naprawa końcówek i bufor A-Tailing | 10 μl |
ddH2O | Do 65 μl |
2. Delikatnie worteksować i krótko odwirować, aby dobrze wymieszać, krótko odwirować i zebrać cały płyn na dno probówki.
3. Wykonaj następującą reakcję w termocyklerze:
Temperatura | Czas |
20°C | 15 minut |
65°C | 15 minut |
4°C | ∞ |
Adapter Łigacja
1. Kontynuuj reakcję ligacji tak szybko, jak to możliwe po przygotowaniu końcówek.
2. Rozcieńczyć adapter zgodnie z tabelą 1.
3. Przygotuj następujący układ reakcyjny:
Odczynniki | Tom |
Produkty do naprawy końcówek i A-Tailing | 65 μl |
Szybki bufor ligacyjny | 25 μl |
Szybka ligaza DNA | 5 μl |
Adapter X | 5 μl |
Całkowity | 100 μl |
4. Delikatnie worteksować i krótko odwirować, aby dobrze wymieszać, krótko odwirować i zebrać cały płyn na dno probówki.
5. Wykonaj następującą reakcję w termocyklerze:
Temperatura | Czas |
20°C | 15 minut |
4°C | ∞ |
ZalecanaSrozwiązanie dlaOczyszczanie PCR/Wybór rozmiaru(konkretna objętość kulki magnetycznej powinna być dostosowana zgodnie z rzeczywistą próbkąrozmiar)
1. Przygotuj 100 μl produktów ligacji do odpowiedniej probówki wirówkowej.
2. Dodać do próbki 100 μl ponownie zawieszonych kulek magnetycznych do selekcji DNA.Delikatnie dmuchać pipetą 10 razy (lub worteksować przez 30 s).Inkubować próbki przez 5 minut w temperaturze pokojowej.
3. Umieść probówkę na odpowiednim stojaku magnetycznym, aby oddzielić kulki od supernatantu.Gdy roztwór stanie się klarowny, ostrożnie usuń i odrzuć supernatant za pomocą pipety (nie wyrzucaj kulek).
4. Dodaj 200 μl świeżo przygotowanego 80% etanolu do probówki znajdującej się na statywie magnetycznym.Inkubować w temperaturze pokojowej przez 30 s, a następnie ostrożnie usunąć i odrzucić supernatant (nie naruszać perełek).
5. Powtórz Krok 4 jeden raz, łącznie dla dwóch prań.
Uwaga: Pamiętaj, aby usunąć cały widoczny płyn po drugim praniu.
6. Suszyć kulki na powietrzu, aż powierzchnia kulek magnetycznych nie będzie miała wyraźnego połysku, gdy probówka znajduje się na stojaku magnetycznym z otwartą pokrywą.
Uwaga: Nie przesuszaj perełek, może to skutkować niższym odzyskiem DNA.Kiedy koraliki zaczną pękać, oznacza to, że są zbyt suche.
7. Wyjmij probówkę ze statywu magnetycznego.Dodać do probówki 22 μl buforu do elucji (10 mM Tris-HCl, pH 8,0-8,5).Dobrze wymieszać, pipetując w górę iw dół co najmniej 10 razy lub na mieszadle wibracyjnym przez 30 sekund.Inkubować przez 3-5 minut w temperaturze pokojowej.
8. Umieść probówkę na statywie magnetycznym.Po 5 minutach (lub gdy roztwór jest klarowny) przenieść 20 μl supernatantu do nowej probówki.Selekcja jest zakończona, a wyselekcjonowane DNA można wykorzystać do kolejnych eksperymentów lub przechowywać przez długi czas w temperaturze -20°C.
Wzmocnienie biblioteki
1. Przygotuj następującą reakcję w 200 μl probówce do PCR:
Odczynniki | Tom |
Produkty do ligacji po oczyszczeniu lub doborze rozmiaru | 20 μl |
2× HIFI Library PCR Master Mix | 25 μl |
Mieszanka podkładowa | 5 μl |
Całkowity | 50 μl |
2. Delikatnie worteksować i krótko odwirować, aby dobrze wymieszać, krótko odwirować i zebrać cały płyn na dno probówki.
3. Wykonaj następującą reakcję w termocyklerze:
Temperatura | Czas | Numer cyklu |
95°C | 3 min | 1 |
98°C | 20 sek |
Wybierz odpowiednią liczbę cykli zgodnie z Tabelą 2 |
60°C | 15 sek | |
72°C | 30 sek | |
72°C | 5 minut | 1 |
4°C | ∞ | - |
ZalecanaSrozwiązanie dlaOczyszczanie PCR/Wybór rozmiaru(konkretna objętość kulki magnetycznej powinna być dostosowana zgodnie z rzeczywistą próbkąrozmiar)
1. Przygotuj 50 μl produktów ligacji do odpowiedniej probówki wirówkowej.
2. Dodać do próbki 45 μl ponownie zawieszonych kulek magnetycznych do selekcji DNA.Delikatnie dmuchać pipetą 10 razy (lub worteksować przez 30 s).Inkubować próbki przez 5 minut w temperaturze pokojowej.
3. Umieść probówkę na odpowiednim stojaku magnetycznym, aby oddzielić kulki od supernatantu.Gdy roztwór stanie się klarowny, ostrożnie usuń i odrzuć supernatant za pomocą pipety (nie wyrzucaj kulek).
4. Dodaj 200 μl świeżo przygotowanego 80% etanolu do probówki znajdującej się na statywie magnetycznym.Inkubować w temperaturze pokojowej przez 30 s, a następnie ostrożnie usunąć i odrzucić supernatant (nie naruszać perełek).
5. Powtórz Krok 4 jeden raz, łącznie dla dwóch prań.
Uwaga: Pamiętaj, aby usunąć cały widoczny płyn po drugim praniu.
6. Suszyć kulki na powietrzu, aż powierzchnia kulek magnetycznych nie będzie miała wyraźnego połysku, gdy probówka znajduje się na stojaku magnetycznym z otwartą pokrywą.
Uwaga: Nie przesuszaj perełek, może to skutkować niższym odzyskiem DNA.Kiedy koraliki zaczną pękać, oznacza to, że są zbyt suche.
7. Wyjmij probówkę ze statywu magnetycznego.Dodać do probówki 22 μl buforu do elucji (10 mM Tris-HCl, pH 8,0-8,5).Dobrze wymieszać, pipetując w górę iw dół co najmniej 10 razy lub na mieszadle wibracyjnym przez 30 sekund.Inkubować przez 3-5 minut w temperaturze pokojowej.
8. Umieść probówkę na statywie magnetycznym.Po 5 minutach (lub gdy roztwór jest klarowny) przenieść 20 μl supernatantu do nowej probówki.Selekcja jest zakończona, a wybrane DNA można przechowywać w temperaturze 2-8°C przez 1-2 tygodnie lub przechowywać w temperaturze -20°C przez długi czas.
[Dodatek]Zalecany schemat wyboru dwustronnego
Jeśli wymagana jest selekcja podwójna, zapewniamy następujący schemat wyboru odpowiedniej objętości kulek magnetycznych zgodnie z oczekiwaną wielkością biblioteki.Wyboru rozmiaru można dokonać przed naprawą końców lub po amplifikacji.Dwie lub więcej podwójnych rund selekcji znacznie zmniejszy wydajność biblioteki.
Wypełnij objętość biblioteki w poniższej tabeli do 100 μl.Wybierz objętość kulek magnetycznych w dwóch rundach zgodnie z oczekiwaną wielkością biblioteki.I przeprowadź operację wyboru zgodnie z poniższymi instrukcjami.
Tabela 3 Zalecana ilość koralików magnetycznych do podwójnej selekcji
Oczekiwany rozmiar biblioteki | 150 pz | 200 pz | 250 pz | 300 pz | 400 pz | 500 pz | 600 pz | 700 pz | |
Objętość perełek (μl) | Runda 1 | 100 | 90 | 80 | 70 | 60 | 55 | 50 | 45 |
Runda 2 | 30 | 20 | 20 | 20 | 20 | 15 | 15 | 15 |
1. Napełnij objętość biblioteki do 100 μl w 200 μl probówce do PCR i oznacz jako A. Dodaj określoną objętość kulek magnetycznych zgodnie z Tabelą 3 (Runda 1) do probówki A. Delikatnie dmuchaj pipetą przez 30 s.Inkubować próbki przez 5 minut w temperaturze pokojowej.
2. Umieść probówkę A na odpowiednim stojaku magnetycznym, aby oddzielić kulki od supernatantu.Gdy roztwór stanie się klarowny, ostrożnie przenieś supernatant do nowej probówki i oznacz ją jako B. Odrzuć kulki.
3. Dodaj określoną objętość kulek magnetycznych zgodnie z Tabelą 3 (Runda 2) do probówki B. Delikatnie dmuchaj pipetą przez 30 sekund.Inkubować próbki przez 5 minut w temperaturze pokojowej.Umieść probówkę B na statywie magnetycznym.Gdy roztwór stanie się klarowny, ostrożnie usuń i odrzuć supernatant.
4. Dodaj 200 μl świeżo przygotowanego 80% etanolu do probówki B znajdującej się na statywie magnetycznym.Inkubować w temperaturze pokojowej przez 30 s, a następnie ostrożnie usunąć i odrzucić supernatant (nie naruszać perełek).
5. Powtórz Krok 6 jeden raz, łącznie dla dwóch prań.
Uwaga: Pamiętaj, aby usunąć cały widoczny płyn po drugim praniu.
6. Suszyć kulki na powietrzu, aż powierzchnia kulek magnetycznych nie będzie miała wyraźnego połysku, podczas gdy probówka B znajduje się na statywie magnetycznym z otwartą pokrywą.
Uwaga: Nie przesuszaj perełek, może to skutkować niższym odzyskiem DNA.Kiedy koraliki zaczną pękać, oznacza to, że są zbyt suche.
7. Wyjmij probówkę B ze statywu magnetycznego.Dodać do probówki 22 μl buforu do elucji.Dobrze wymieszać, pipetując w górę iw dół co najmniej 10 razy lub na mieszadle wibracyjnym przez 30 sekund.Inkubować przez 3-5 minut w temperaturze pokojowej.
Uwaga: Jeśli docelowe wychwytywanie nie zostanie przeprowadzone, dodać bufor do elucji (10 mM Tris-HCl, pH 8,0-8,5) w celu elucji.W przeciwnym razie do elucji należy użyć sterylizowanej ultraczystej wody.
- Umieść probówkę B na statywie magnetycznym.Przenieść 20 μl supernatantu do nowej probówki.
Wyłącznie do użytku badawczego